Клональне мікророзмноження рододендронів залежно від сортових особливостей та типу середовища
DOI:
https://doi.org/10.47414/na.10.1.2022.265110Ключові слова:
насіння, пагони, живильні середовища, гормони, БАП, зеатинАнотація
Мета. Розробити клональне мікророзмноження для представників роду Rhododendron L. залежно від сортових особливостей та типу середовища.
Методи. Для стерилізації і введення в культуру in vitro було використано насіння рододендронів різних культиварів: ‘Summetglut’, ‘Cunningham`s White’, ‘Grandiflorum’, ‘Libretto’, ‘Якушиманский’, ‘Shamrock’, ‘Balalaika’. Стерильні пагони висаджували на різні типи живильних середовищ, як-от Мурасіге і Скуга (MC), Гамборга й Евелега (B5) і Андерсона (An), які модифікували різним складом і концентрацією гормонів – БАП і зеатин.
Результати. Незалежно від сортових особливостей найбільшу кількість і висоту пагонів рододендронів сформовано на середовищі за прописом Андерсена – 12 шт. та 7 см. Найменшу кількість і висоту погонів відмічено в культиварів ‘Якушиманский’ та ‘Balalaika’ на всіх типах живильних середовищ. На живильному середовищі за прописом Андерсона сорт ‘Cunningham`s White’ додатково формував 10 шт. пагонів, а ‘Grandiflorum’ – 12 шт. Також у цих сортів відмічено й найвищу висоту – 7 см. На середовищі MC ці сорти формували 2 і 4 шт. пагонів заввишки 2,5 і 3 см відповідно. Найліпшу пагоноутворювальну здатність було зафіксовано на живильному середовищі за прописом Андерсона – від 8 до 22 шт. Найбільшу кількість новоутворених пагонів відмічено в сорту ‘Grandiflorum’ – 20 і 22 шт. відповідно. Дещо нижчим цей показник був у сортів ‘Shamrock’ – 17 і 21 шт., ‘Cunningham`s White’ – 18 шт., ‘Libretto’ – 15 і 17 шт. відповідно. Найнижчою пагоноутворювальною здатністю відзначалися сорти ‘Якушиманский’ – 8 і 10 шт. та ‘Balalaika’ – 9 шт.
Висновки. За використання зеатину кількість пагонів в усіх досліджуваних культиварів була майже такою ж, як і за концентрації БАП 1,0 мг/л. На живильному середовищі Гамборга й Евелега сформовано найменшу кількість та найнижчу висоту пагонів, окрім того, пагони всіх сортів мали пригнічений стан. Це середовище і його модифікації не забезпечують достатньої кількості пагонів та не можуть бути рекомендованими для клонального мікророзмноження рододендронів. Живильне середовище MC з додаванням БАП (1,0 мг/л) дає змогу отримати від 0, 8 до 7 см висоти культиварів, а за використання зеатину (0,5 мг/л) – від 1,8 до 9 см відповідно. Незалежно від сортових особливостей і типу живильних середовищ, зі збільшенням концентрації зеатину до 1,0 мг/л спостерігається вітрифікація пагонів.
Посилання
Vanzar, O. M., & Romaniuk, V. V. (2005). Prospects for growing rhododendrons in Northern Bukovyna. Chernivtsi: Ruta. [In Ukrainian]
Trigiano, R. N., & Gray, D. J. (Eds.). (2016). Plant Tissue Culture. Development, and Biotechnology. Boca Raton, FL: CRS Press.
Voitovska V. I., Ukrainets, O. A., Osipov, M. Yu., & Maslovata, S. A. (2020). Features of sterilization of various explants of rhododendrons (Rhododendron L.) and their introduction in vitro. Advanced Agritechnologies, 8. doi: 10.47414/na.8.2020.231231 [In Ukrainian]
Andreieva, V., & Shepeliuk, M. (2018). Microclonal reproduction of decorative plants of the genus Rhododendron L. Sworld-Us Conference Proceedings, 1, 35–39. doi: 10.30888/2709-2267.2022-09-01-002 [In Ukrainian]
Vehera, L. V. (2006). Bioecological features and culture of rhododendrons in the conditions of the Right-Bank Forest-Steppe of Ukraine. M. A. Kokhno (Ed.). Uman: ALMI. [In Ukrainian]
Oliynyk, O. О., Kluvadenko, A. А., & Melnychuk, M. D. (2016). Optimization of culture media content for acceleration of growth and cultivation of Rosa damascena Mill. in in vitro culture. Scientific Bulletin of UNFU, 26(7), 134–139. doi: 10.15421/40260721 [In Ukrainian]
Zelenina, H. A. (2005). Effect of nutrient medium components on micropropagation efficiency of Arnica foliosa Nutt. in vitro. The Bulletin of Kharkiv National Agrarian University. Series Biology, 2, 89–93. [In Ukrainian]
Murashige, T., & Skoog, F. (1962). A Revised Medium for Rapid Growth and Bio Assays with Tobacco Tissue Cultures. Physiologia Plantarum, 15(3), 473–497. doi: 10.1111/j.1399-3054.1962.tb08052.x
Marchuk, O. O., & Kyryliuk, V. I. (2008). Preservation and reproduction of valuable genotypes in vitro. Scientific Reports of the National Agrarian University, 4. [In Ukrainian]
Dziuba, O. I. (2001). The physiоlogical and biochemical properties of Rhododendron luteum Sweet: allelopathic analysis (Extended Abstract of Cand. Biol. Sci. Diss.). Kyiv: Institute of Plant Physiology and Genetics NAS of Ukraine. [In Ukrainian]
Vasilieva, O. G., & Aleksandrova, M. S. (2005). Biological features of clonal propagation and in vitro regeneration of introduced species of Rhododendron L. Bulletin of the Main Botanical Garden, 189, 252–259. [In Russian]
Podhaietskyi, A. A., Matskevych, V. V., & Podhaietskyi, A. A. (2018). Peculiarities of microclonal propagation of plant species. Bila Tserkva: BNAU. [In Ukrainian]
Vlasenko, M. Yu., Matskevych, V. V., Dulniev, P. H., & Kozak, A. L. (2009). Determination of the ontogenesis of potato plants in vitro by synthetic phytohormones of the cytokinin class. In Materials of theses of the international scientific and practical conference “Innovative agricultural technologies in conditions of global warming” (Vol. 1, pp. 24–25). Melitopol, Ukraine. [In Ukrainian]
Sharma, C., Kaur, M., Kaur, A., & Gosal, S. S. (2012). In vitro plant regeneration studies in three indica rice varieties. International Journal of Agriculture, Environment and Biotechnology, 5(4), 309–313.
Almeida, R., Goncalves, S., & Romano, A. (2005). In vitro micropropagationo fendangered Rhododendron ponticum L. subsp. baeticum (Boissierand Reuter) Handel-Mazzetti. Biodiversity and Conservation, 14(5), 1059–1069. doi: 10.1007/s10531-004-8413-3
Riabovol, L. O. (2001). Clonal microreproduction of plants: guidelines for laboratory and practical classes on "Plant Biotechnology". Uman: USAA. [In Ukrainian]
Zarubenko, A. U., Tymchyshyn, H. V., & Shumyk, M. I. (2004). Methodical recommendations for reproduction and cultivation of rhododendrons in Ukraine. Kyiv: Fitosotsiotsentr. [In Ukrainian]
Ermantraut, E. R., Prysiazhniuk, O. I., & Shevchenko, I. L. (2007). Statistical analysis of agronomic research data in package Statistica 6.0. Kyiv: PolihrafKonsaltynh. [In Ukrainian]
